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尊龙凯时推荐的三种T细胞增殖实验方法

发布时间:2025-08-04   信息来源:尊龙凯时官方编辑

活细胞染料(如CFSE)与胞内蛋白的共价结合使得在细胞分裂过程中,染料能够均匀分配至子代细胞中,随着代次的增加,荧光强度逐代减半。借助流式细胞术检测这一荧光衰减,可以有效追踪细胞的增殖代数。

尊龙凯时推荐的三种T细胞增殖实验方法

染料标记过程

在进行T细胞的染料标记时,使用CFSE(浓度为1-5μM)进行避光孵育10分钟。随后,使用冷却的培养基终止刺激培养,接着采用抗CD3/CD28抗体或ConA进行激活,培养时间为48-72小时。通过流式细胞分析检测荧光强度,使用FlowJo软件拟合分裂峰,能够追踪至少8代的细胞分裂,并兼容多色流式分析(例如:CD4/CD8/活化标志物的联合使用),动态反映增殖的异质性。

需要注意的是,高浓度的染料可能具有细胞毒性,因此需进行适当的浓度优化。此外,流式细胞仪的应用场景包括基因修饰T细胞的功能评估、免疫抑制剂的动态药效分析及亚群增殖差异研究。

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  • EasyIso™ mouse CD4 T细胞分离试剂盒 货号:SN4102
  • EasyIso™ mouse CD8 T细胞分离试剂盒 货号:SN4103
  • EasyIso™ mouse Naive CD4 T细胞分离试剂盒 货号:SN4104
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增殖细胞的定量分析方法

在细胞的DNA合成期,增殖细胞可摄入胸腺嘧啶类似物(如BrdU或EdU),并利用抗体检测(BrdU)或点击化学反应(EdU)对增殖细胞的比例进行定量分析。

BrdU法中,首先刺激培养,在T细胞激活后加入BrdU(浓度为10μM)进行4-24小时的孵育,随后通过乙醇或甲醛固定,使细胞膜破裂。再经过酸/酶解步骤暴露DNA,以抗BrdU抗体结合后,使用荧光二抗进行检测,最终通过流式或荧光显微镜进行分析。

EdU法推荐使用,由于其不需要抗体的检测,流程更为简便:培养中直接加入EdU(10μM),通过Cu⁺催化实现EdU与荧光染料的偶联。

增殖细胞的代谢评估

增殖细胞的线粒体代谢增强时,还原性染料(如MTT/XTT)会产生有色产物,其吸光度(OD值)与活细胞数量成正相关。诱导的刺激培养中,可以将T细胞接种于96孔板中,并施加激活剂。对于染料的添加,MTT法是通过在培养结束前4小时加入MTT(0.5mg/mL),随后用DMSO溶解甲臜来实现,而推荐的CCK-8法则是直接加入CCK-8试剂(10%),孵育2-4小时后读取数据。

这两种方法操作简便,无需特殊设备,且具有高通量(适合药物筛选),CCK-8的毒性低且数据更为稳定,但需注意其仅间接反映增殖情况(代谢活性≠增殖),容易受到凋亡或坏死细胞的干扰。

总结

不同增殖检测方法的适用场景包括免疫抑制剂的初步筛查、疫苗佐剂效果的评估以及大规模的增殖表型鉴定等。针对动态追踪亚群差异的研究,可以选择CFSE方法(例如Th17与Treg的增殖动力学),而固定时间点的增殖率检测则可采用EdU(因其操作更快速且免去变性步骤)。高通量化合物筛选可利用CCK-8法(适合96/384孔板)。

通过结合CFSE和EdU双重标记方法,研究者能够同时分析细胞的分裂代数与S期细胞的比例,但需配置多激光流式仪器。掌握这三种方法的原理与优化要点,尊龙凯时的支持将为您的T细胞增殖研究需求提供精准的数据支撑,助力免疫机制探索与治疗开发。